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蛋白组学二维电泳.ppt


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浙江大学
生命科学学院
江 辉
密码:shenghua
202X
第二章 二维电泳与蛋白质分离
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一、蛋白质的提取与样品制备
二、二维等电聚焦-SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳维等电聚焦电泳
三、胶上蛋白质检测技术
202X
蛋白质染色方法
胶内:考马斯亮蓝R-250 (CBB R-250)、CBB G-250、银染、负染、荧光染料染色以及放射性同位素标记等
转移到膜(PVDF、硝酸纤维素膜)上:酰胺黑(Amido Black)、丽春红S(Ponceau S)
(一)考染(考马氏亮蓝染色)
考马氏亮蓝与蛋白质反应机理
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考马氏亮蓝(Coomassie brilliant blue)是一类三苯基甲烷衍生物。分为R-250(红兰色)、R-350 (红兰色) 、G-250(蓝绿色),它们与蛋白质结合生成深蓝色复合物,在464-595nm有吸收峰( 595nm 最大),且在比较宽的范围内(15-20 μg )扫描峰的面积与蛋白质量成线性关系,因此可在595nm对蛋白质进行定量检测,而且在一定pH条件下,这种染料-蛋白质复合物被完全解聚。
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考染机理
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胶体内染料和溶液中自由扩散染料间形成平衡后,溶液中少量自由染料穿透凝胶基质,有选择性地对蛋白质进行染色,而胶体态的染料排阻在胶外,阻止了背景的生成。胶内蛋白质染色的关键是让蛋白质染色,而胶体不染色。
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Coommassie Brilliant Blue G-250
考染程序
考染程序至少600多种,主要变换是将以下程序中的醋酸换成三氯乙酸、磷酸或高氯酸,但三氯乙酸易使谷氨酸羧基侧链不可逆酯化,造成肽谱数据复杂化。 固定:凝胶浸泡于50%乙醇+10%冰醋酸水溶液中,至少1h,可过夜。 染色:凝胶浸泡于染色液中至少2h。染色液组成:45%甲醇+10%冰醋酸+%考马氏亮蓝G-250,混均过滤。 脱色:多次更换脱色液,直至背景脱净,稍稍提高温度可加快脱色。脱色液组成:25%乙醇+8%冰醋酸。 保存:凝胶脱色后水洗扫描备份,用保鲜膜包裹,一个月内进行质谱鉴定;长时间保存需将蛋白点切下,进一步脱色后贮于-80 ℃。
4、考染特点
可以获得无背景或低背景的图谱; 染色过程需24-48h,所需时间较长; 灵敏度不高,为100-10ng,只能检测10- 100ng 的蛋白质,低丰度的蛋白质难以显色。
(二)银染
原理:
碱性银氨(Ag(NH3)2+)染色法和酸性硝酸银(AgNO3)染色法。
酸性硝酸银染色法的原理是一个照相的过程,凝胶在酸性环境下与硝酸银温育,银离子附与蛋白质表面,然后在碱性环境下里用福尔马林还原成金属银。
碱性银氨染色法的原理是用氨水来形成银氨复合物,银氨复合物与胶内SDS-蛋白质复合物结合,然后在酸性条件下用福尔马林将银氨还原成金属银。
酸性银染染色背景浅、容易控制,对酸性蛋白质的染色灵敏度稍高;碱性银染灵敏度稍高,但背景深、不容易控制。 相对于考染,灵敏度高,可达200pg。 但由于存在戊二醛的特异性反应,对下一步的酶切肽谱提取存在困难;增敏过程蛋白质被部分提取至胶外。
特点
1. 分析型银染(碱性银氨法,不能用于质谱鉴定) (1) 水洗胶5 min; (2) 40%乙醇,10%乙酸固定1 hr; (3) 5%乙醇,5%乙酸固定过夜; (4) 水洗20 min两遍; (5) 5%戊二醛 1 h; (6) 水洗30 min,四遍; (7) 250mL新鲜配制的银氨液(1mL NaOH 与5mL 饱和氨水混合再加10mL 20%AgNO3)/胶45 min; (8) 水洗3 min,三遍; (9) mL 1%柠檬酸、125μL 37%甲醛/胶显色; (10) 5%乙酸停显10min; (11) 水洗10 min三遍。
3、程序

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  • 时间2025-02-12