关于脱毒苗培养
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一、脱毒的意义:
无性繁殖作物长期营养繁殖,易受病毒侵染,而使病毒在体内积累,导致种性退化,造成产量下降或品质降低甚至死亡,给农业造成巨大损失。
通过茎尖培养获得无植物中应用。
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微体嫁接
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微体嫁接的方法:
(1)试管砧木的准备:将无病毒种子表面灭菌后接种与MS培养基,黑暗条件下培养15d使其发芽。
(2)茎尖嫁接:在超净工作台上,将幼苗的上胚轴和子叶去掉,根系截短,,长2-3cm的切口,在斜切口末端横切一刀,用去掉切下部分。在体视显微镜下,,小心放于切口的水平面上,切面向下并与砧木切口形成层组织紧密贴合,然后接于培养基上。
(3)嫁接苗培养:将嫁接苗置于光下培养,光照时数16h,嫁接1周后形成愈伤组织,2-3周愈合,5-6周后接穗发育为新梢。
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2. 微体嫁接脱毒的关键:
影响微体嫁接成活率的主要因素为接穗大小和取样时间。与接穗大小呈正相关,而无病毒植株获得与接穗茎尖的大小呈负相关。,春季取材嫁接的成活率高于其他季节。
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(3)热处理脱毒:
通过热处理可以由受病毒侵染的个体得到无病毒植株,其原理是利用病毒与植物的耐热性不同,在高于常温的环境下,植物组织中的病毒受热后可被部分或全部钝化或失去活性,而寄主植物组织很少或不会受到伤害。或高温下植物生长快,而病毒增殖慢而使植物新生部分不带病毒。
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可以通过温汤浸渍或热空气处理法脱毒,前者对休眠芽效果较好,后者对活跃生长的茎尖效果较好。
热空气处理即把旺盛生长的植物移入热疗室,在35-40℃下处理一定时间(几分钟到数周)热处理后将茎尖切下嫁接于无病毒砧木或进行组织培养。热处理温度应逐步升高,直到要求温度。
温汤浸渍的材料常用50-55 ℃处理10-50min或35 ℃温水处理30-40min。
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2. 热处理脱毒条件:
(1)温度和持续时间:因病毒种类而异,有些33-34℃处理28-33d即可脱毒,而有些必须在39-42 ℃处理50-60d,耐热杆状病毒热处理脱毒效果差。在植物的耐热范围内,温度越高,脱毒效果越好。一般采用35-38 ℃.尤其37℃恒温处理30±2天为普遍。也可采用高低温处理减少对植物的损伤。如马铃薯40 ℃ (4h)+16-20 ℃(20h)。
(2)湿度和光照:湿度以70-80%为适宜。光照以自然光最好。
(3)前处理:27-35 ℃ 1-2周。
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(四)其他脱毒方法:
花器官培养脱毒:由植物的花器官培养脱分化形成愈伤组织,然后再分化不定芽,可以获得无毒苗。如草莓花药培养。
2. 珠心胚培养脱毒:柑橘类珠心胚与微管组织没有联系,一般不带毒,可以利用珠心胚进行培养获得。
:采用病毒唑等试剂处理材料或添加到培养基中可以钝化病毒,达到一定的脱毒效果。
4. 超低温处理脱毒:经过冷冻保护剂处理过的茎尖材料,采用液氮处理(-196℃)可以钝化病毒,达到脱毒效果,该方法已在香蕉等果树中成功应用。
5. 合并热处理、茎尖培养或微嫁接脱毒:采用多种方法同时处理可以达到更好的脱毒效果。
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二、病毒检测方法:
1、形态鉴定: 根据植株的生长状态鉴定是否脱毒,但不准确。
2、指示植物鉴定法:利用特定的易于感染某些病毒的指示植物的特征进行病毒鉴定。
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指示植物
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CMV病毒感染的植株叶片
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3、抗血清鉴定法:利用抗原和抗体的特异性反应原理进行病毒鉴定。用已知病毒的抗血清(antiserum)鉴定未知病毒。
近年来又在此基础上发展出酶联免疫法(Enzyme Linked Immunosorbent Assay,ELISA),方法是将抗原固定在支持物上,加入待检血清,然后加入酶(过氧化物酶或碱性磷酸酶)标记的抗体,使待检血清与对应抗原的特异性抗体结合,最后用分光光度计进行诊断。
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酶联免疫法进行病毒鉴定
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4、电子显微镜检测(Electronmicroscope):采用电子显微镜对病毒的薄样品(约1--100um)或纯化的病毒悬液中进行病毒的直接观察。
5、RT-PCR检测(Reverse Tran
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